Hygienemerkblätter (HMB) der UMR

Candida auris

Meldepflicht

Laut Infektionsschutzgesetz § 6 (3) sind 2 oder mehr noso­komiale Infektionen, bei denen ein epidemischer Zusammen­hang wahrscheinlich ist oder vermutet wird, nicht namentlich zu melden an:

Gesundheitsamt
Abteilung Infektionsschutz
Paulstraße 22
18055 Rostock
0381 / 381 5369

Formulare sind hier bzw. im SAP abrufbar.

Laut Infektionsschutzgesetz § 7 (1) ist der Nachweis aus Blut oder anderen normalerweise sterilen Substraten namentlich zu melden - Meldung erfolgt durch das Labor!

Erreger

Candida auris

Infektiöses Material

  • Jedes Material, in dem ein Keimnachweis gegeben ist,
    • z. B. Wundsekrete, Blut, Urin, Stuhl, Atemwegssekrete etc.
  • Benutzte Medizinprodukte

Übertragungsweg

  • Übertragung des Erregers vorrangig über kontaminierte Hände!
  • Eine besondere Rolle spielen Medizinprodukte sowie die patientennahe Umgebung.

Inkubationszeit

variabel

Dauer der Infektiosität

Ohne Behandlung

So lange eine Besiedelung/Infektion vorliegt.

Aufhebung der Isolierung

Wenn 3 aufeinander folgende Abstriche an zuvor positiven Abstrichorten negativ sind.

Diagnostik (zum Erstnachweis bzw. Verlauf)

Instruktionen

  • siehe unter PunktScreening- bzw. Kontrollabstriche“

Regelhaft erfolgt der Nachweis mit Kulturmethoden.

Ein Nukleinsäuretest (PCR) steht für septische Patienten aus der Blutkultur zur Verfügung (Sepsis-Mplx-PCR).

Hygienemaßnahmen/Schutzmaßnahmen

Die Lagerung der persönlichen Schutzausrüstung (PSA) kann im bzw. vor dem Patientenzimmer erfolgen.

Dabei sind die baulichen Gegebenheiten sowie etwaige patientenspezifische Regelungen im Hygienemanagement entscheidend.

Isolierung

Erforderlich

  • Bereits bei Verdacht.
  • Bei Nachweis in Untersuchungsmaterialien vom jeweiligen Abstrichort.

Kohortenisolierung

  • Eine gemeinsame Unterbringung mehrerer Patienten mit Candida auris ist möglich.

Aufnahme bzw. Wiederaufnahme

  • Bei Aufnahme/Wiederaufnahme bekannter C. auris-Patienten (z. B. bei Entlassung positiver C. auris-Abstriche) initiale Isolierung.
  • Aufhebung der Maßnahmen nach drei negativen Kontroll­abstrichen.

Kontaktpatienten

Sind alle Patienten, die mit einem C. auris–Patienten in einem Zimmer gelegen haben, unabhängig von der Kontaktzeit.

Umgang mit Kontaktpatienten

  • Bis zum Nachweis von negativen Kontrollabstrichen im Abstand von einer Woche: Isolierung!

Besucher

Die jeweiligen Patientenzimmer sind mit Isolierungstafeln zu kennzeichnen.

Alle Personen (Besucher wie Mitarbeiter) müssen sich vor dem Betreten des Zimmers im Stationsstützpunkt melden.

Das Anlegen von Schutzkleidung ist zwingend erforderlich.

Händehygiene siehe unter Händedesinfektion

Ambulanter Bereich/Aufwachraum

Patienten mit Candida auris  müssen isoliert werden und können aus diesem Grund nicht gemeinsam mit anderen Patienten im Aufwachraum/Wartebereich versorgt werden.

Händedesinfektion

Händedesinfektion gemäß Basishygieneordnung.

Alle im Hause verfügbaren Händedesinfektionsmittel sind geeignet.

Einwirkzeit beachten!

Patienten und Besucher werden durch das Stationspersonal zu regelmäßiger Händedesinfektion aufgefordert.

Die Anleitung erfolgt durch das Stationspersonal.

Einmalhandschuhe

Erforderlich bei Kontakt mit erregerhaltigem Material, Körper­flüssigkeiten oder Ausscheidungen.

Entsorgung im Zimmer.

Nach dem Ablegen hygienische Händedesinfektion!

Schutzkittel

Erforderlich beim Umgang mit kontaminiertem Material, dem Patienten selbst oder der kontaminierten Umgebung.

Tragen eines Schutzkittels beim Bettenmachen!

Bei der Versorgung mehrerer Patienten im Zimmer zusätzlich patientenbezogene Einwegschürze verwenden.

Schutzkittel/Einwegschürzen werden im Zimmer entsorgt.

Mund–Nasen-Schutz

Erforderlich bei nasal und/oder pharyngealer besiedelten Patienten, insbesondere wenn diese Zeichen einer Atemwegsinfektion zeigen.

Wäscheentsorgung

Entsorgung im Patientenzimmer bzw. Schleuse.

Transport zur Wäscherei im fest verschlossenen Wäschesack.

Die Entsorgung im Plastiksack ist nur bei Durchfeuchtung notwendig.

Geschirr

Geschirrspülautomat, Betriebstemperatur > 60 °C.

Sofern vorhanden, chemisch-thermische Desinfektion mit Gewerbegeschirrspüler

Bei Ausbrüchen

  • Verwendung von Einweggeschirr.

Anforderung unter:

Servicebüro

0381 494 5323

Speisenverteilzentrum Neuendorf

 038204 726811

Pflege-/Behandlungs- und Untersuchungsgeräte und -Hilfsmittel (Medizinprodukte)

Vorzugsweise Einmalprodukte verwenden oder patientenbezogener Einsatz.

Nach Gebrauch mit einem sporiziden Mittel desinfizierend reinigen bzw. Aufbereitung nach Herstellerangaben bzw. verwerfen.

Vorratshaltung von Wäsche, Medikamenten und Sterilgut im Zimmer auf ein Minimum reduzieren.

Abfallentsorgung

Normale Entsorgung (‘‘Krankenhausspezifische Abfälle‘‘- AS 180104/180101/Abfallgruppe B)

Fäzes und Urin in die Kanalisation

Flächendesinfektion

Quarternäre Ammoniumverbindungen wirken nicht ausreichend.

Desinfektion aller erreichbaren Flächen im Patientenzimmer mit sporizidem Desinfektionsmittel mindestens 1x pro Schicht und bei Entlassung bzw. sofortige Desinfektion nach Kontamination.

Verwendung von sporizidem Flächendesinfektionsmittel.

Einwirkzeit beachten!

(Dismozon plus über Apotheke der UMR abrufbar, Anwendungskonzentration 1,2 % = 3 Beutel/4l)

Patiententransfer

Die Zieleinrichtung und das Transportpersonal sind über die C. auris-Besiedlung/Infektion vorab zu informieren.

Patient

Erhält bei nachgewiesener nasaler und/oder pharyngealer Besiedlung einen Mund-Nasen-Schutz.

Vor dem Verlassen des Zimmers sind die Hände zu desinfizieren, gegebenenfalls passiv durch das Personal.

Bei Wundinfektionen mit C. aurismuss vor dem Transport ein Verbandwechsel durchgeführt werden, wenn dieser durchfeuchtet ist oder sich gelöst hat.

Erfolgt der Transport des Patienten im Bett, müssen die Kontaktflächen des Bettgestelles vor dem Transport desinfiziert und die Bettwäsche gewechselt werden.

Sporizide Desinfektion von Geräten/Medizinprodukten, die aus demPatientenzimmer mitgenommen werden müssen.

Personal

Trägt Schutzhandschuhe und beachtet die Regeln zur Hände­desinfektion.

Nur bei direktem Kontakt zum Patienten, z. B. beim Umlagern, ist ein Schutzkittel und gegebenenfalls ein Mund-Nasen-Schutz anzulegen.

Hygienische Händedesinfektion nach Ablegen der Schutzausrüstung.

Nach dem Transport ist eine gezielte sporizide Flächen­desinfektion von allen Kontaktflächen durchzuführen.

Medizinprodukte

Unmittelbar nach dem Transport Kontaktflächen desinfizieren.

Besonderheiten im OP

Direkte Einschleusung/Einleitung im OP-Saal.

Personal muss entsprechende PSA tragen.

Behandlung infektiöser Patienten am Ende des OP-Programms, danach Wischdesinfektion siehe Desinfektionsmittelplan.

(Dismozon plus über Apotheke der UMR abrufbar, Anwendungskonzentration 1,2 % = 3 Beutel/4l)

Einwirkzeit beachten!

Besonderheiten für das Personal

Schwangere Mitarbeiterinnen

Arbeiten auf Station ist möglich.

Jeder Kontakt mit dem erkrankten Patienten bzw. mit Material von diesem Patienten, ist zu vermeiden.

Screening- bzw. Kontrollabstriche

Abstrich mit sterilem beflockten Stieltupfer sowie Röhrchen mit malvenfarbenen Deckel und Transportmedium für die Untersuchung mittels Pilzkultur.

Eine routinemäßige Untersuchung von unverdächtigen Patienten und jeglichem medizinischem Personal auf Candida auris ist nicht notwendig.

Risikofaktoren

Patienten,

  • die direkt von einer ITS im Ausland verlegt wurden
  • die direkt von einer Gesundheitseinrichtung im Ausland verlegt wurden bzw. innerhalb der letzten 6 Monate im Ausland stationär behandelt wurden, insbesondere Länder mit bekannten Fällen von C. auris
    (Italien, Griechenland, Spanien, UK)
  • mit Kontakt zu einem bestätigten C. auris-Fall
  • bei denen bereits in der Vergangenheit C. auris nachgewiesen wurde

Abstriche im Sinne eines Screenings

Probennahme

Ein Abstrich von

  • Beiden Nasenvorhöfen
    • mit sterilem beflockten Stieltupfer
  • Axilla beidseits
    • mit separatem sterilen beflockten Stieltupfer
  • Leistenabstrich beidseits
    • mit separatem sterilen beflockten Stieltupfer
  • gegebenenfalls Rektum (Rektalabstrich) oder Einsendung von Stuhl

Falls vorhanden zusätzlich ein Abstrich von

  • Wunden, Drainagen, bzw. Einsendung von Urin bei liegendem Blasenkatheter

Vorgehen bei Candida auris-Kolonisation bzw. –Infektion

Kontrollabstriche

Unter einer Candida auris-wirksamen Antimykotikatherapie sind Kontrollabstriche nicht sinnvoll!

Eine lokale Behandlung und die Antimykotikatherapie sollte mindestens 7 Tage vor den Kontrollabstrichen beendet worden sein.

Ein Kontrollabstrich ist frühestens 3 Monate nach der letzten positiven Kultur in Betracht zu ziehen.

Es werden 3 Kontrollabstriche an 3 aufeinanderfolgenden Tagen abgenommen.

Kontrollabstriche von jeder nachweislich besiedelten / ehemals infizierten Körperregion abnehmen.

Dies beinhaltet beide Nasenvorhöfe, Axilla und Leiste beidseits und gegebenenfalls Wunden, Urin usw..

Bei Materialeinsendung dem Labor Untersuchungsanlass unbedingt mitteilen!

Kontaktpatienten

Ein Abstrich von

  • beiden Nasenvorhöfen
    • mit sterilem beflockten Stieltupfer
  • Axilla beidseits
    • mit separatem sterilen beflockten Stieltupfer
  • Leistenabstrich beidseits
    • mit separatem sterilen beflockten Stieltupfer
  • gegebenenfalls Rektum (Rektalabstrich) oder Einsendung von Stuhl

Falls vorhanden zusätzlich ein Abstrich von

  • Wunden, Drainagen, bzw. Einsendung von Urin bei liegendem Blasenkatheter

Dekolonisierung

Patient

Allgemein

  • 1x täglich Wäschewechsel
    • Kleidung, Bettwäsche, Handtücher
  • 1x täglich antiseptische Ganzkörperwaschung (inklusive Haarwäsche) mit einer antimikrobiellen Waschlotion oder antiseptischen Einmal-Waschhandschuhen
    • Anwendungen siehe Herstellerangaben
    • Antimikrobielle Waschlotion z. B.: Octenisan wash lotion
    • Antiseptische Einmal-Waschhandschuhe z. B. Schülke octenisan
  • Persönliche Gegenstände sind im Zimmer zu belassen, zu desinfizieren bzw. auszutauschen
    • z. B. Rasierer, Kopfhörer oder Ähnlichem
  • Verwendung von Deo-Spray (Deodorant)
    • Angebrochener Deo-Roller bzw. festes Deodorant oder feste Creme ist zu verwerfen!

Maßnahmen sind für die Dauer der stationären Betreuung oder maximal für 4 Wochen, unter Beachtung der jeweiligen Herstellerangaben, durchzuführen.

Wundbehandlung

Behandlung von Candida auris–infizierten bzw. –kolonisierten Wunden oder Hautläsionen erfolgt nach ärztlicher Anordnung, gegebenenfalls Rücksprache mit der Wund-/Enterostomatherapeutin.

Umgang mit Medizinprodukten

  • Nach Gebrauch oder bei Kontamination mit einem sporiziden Desinfektionsmittel desinfizierend reinigen bzw. Aufbereitung nach Herstellerangaben.
  • Optimal ist die Verwendung von Einmalprodukten.

Personal

Allgemein

In der Regel Sanierung nach Absprache mit der Klinik-/Stationsleitung und/oder dem betriebsärztlichen Dienst unter Beratung durch die Krankenhaushygiene.

Stand: Januar 2025

Candida auris

Weiterführende Informationen

Einsenderhinweise

(Auszug Einsenderhinweise IMIKRO)

Candida spp.

Candida spp.

Verfahren

Kultureller Nachweis

Nachweis von Antigen/Antikörpern

Nachweis von DNA

Indikation

 
  • Oberflächliche Haut- und Schleimhautmykosen
  • Erfolglose (empirische) antibiotische Therapie bei Verdacht auf eine bakterielle Infektion
  • Monitoring bzw. Früherfassung beginnender Mykosen
    (Transplantierte, Intensivpatienten mit und ohne Immunsuppression mit hohem Risiko für eine Candida-Infektion z. B. aufgrund einer Breitspektrumantibiose, Diabetes mellitus)
 

Material

Kultureller Nachweis

  • Abstriche, Gewebeproben, Punktat
  • Augenkammerwasser
  • Blutkultur
  • Katheterspitze
  • Liquor
  • Respiratorische Materialien
  • Stuhl
  • Urin

PCR

Primär sterile Materialien (Bsp.):

  • EDTA-Blut, Liquor, Augenkammerwasser

Serologie

  • Serum oder Plasma zum Antigennachweis
  • Serum zum Antikörpernachweis
 

Methode

Kultureller Nachweis

auf selektiven bzw. selektiv-differenzierenden Nährböden mit anschließender Identifizierung und gegebenenfalls Antimykogramm

Antikörpernachweis

Quantitativer Nachweis mit indirektem Hämagglutinationstest

Antigennachweis

Semiquantitativer Nachweis von Candida-Mannan-Antigen mittels ELISA

PCR

mit Inhouse-PCR sowie mit kommerziellem Multiplex-Real­time-PCR-System (off-label use)

Lauris-
Auftragserteilung

Kultur

Pilze (Kultur) → gewünschte Untersuchung → Sprosspilze

Serologie

  • Serologie Pilze (Serum) → gewünschte Untersuchung → Antigennachweis → Candida Ag
  • Serologie Pilze (Serum) → gewünschte Untersuchung → Antikörpernachweis → Candida Ak

PCR

  • PCR/allgemeine Auftragsinformation → PCR Pilze → Pilzkonsensus PCR bzw.
  • PCR/allgemeine Auftragsinformation → Multiplex PCR (div. Material, off-label use → Multiplex PCR → Multiplex PCR Punktat (off label use)
 

Weiterführende Informationen

Ein kultureller Nachweis zur Spezies-Identifizierung und eventueller Empfindlichkeitstestung ist anzustreben.

Antigen- und Antikörper-Nachweise haben in der Überwachung von Risikopatienten einen wichtigen Stellenwert.

Die Pilz-PCR aus Nativmaterial dient als ergänzende Unter­suchung zum kulturellen Nachweis, beziehungsweise als eine weiterführende Möglichkeit zur Speziesidentifizierung der Kultur.

Stand: Januar 2021

Candida spp.

Zeitliches Bearbeitungsschema

Erreger

Nachweisart

Geeignete Materialien

Mo.

Di.

Mi.

Do.

Fr.

Sa.

So.

Campylobacter spp.

AK

Ser.

 

x

     

Campylobacterspp.

Kultur

Stu.

x

x

x

x

x

x1

x1

Campylobacterspp.

PCR

Stu.

x

x

x

x

x

 

x1

Candida spp.

AG

Ser.

 

x

  

x

  

Candida spp.

AK

Ser.

 

x

  

x

  

Candida spp.

Kultur

siehe "mögliche Materialien"

x

x

x

x

x

x1

x1

Chlamydia pneumoniae

AK

Ser.

 

x

  

x

  

Chlamydia pneumoniae

PCR

AWM

x

x

x

x

x

x1

 

Chlamydia psittaci (Ornithose)

AK

Ser.

 

x

  

x

  

Chlamydia trachomatis

AK

Ser.

 

x

  

x

  

Chlamydia trachomatis

PCR

Cervixabstr., Urethraabstr., Erststr.-Ur.

 

x

  

x

  

Clostridioides difficile

PCR

Stu.

x

x

x

x

x

 

x1

Coronavirus (NL63, 229E, OC43)

PCR

AWM

x

x

x

x

x

x1

 

Coronavirus (SARS-CoV-2)

PCR

AWM

x

x

x

x

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x1

x1

Coxiella burnetii (Q-Fieber)

AK

Ser.

  

x

    

Coxsackievirus

AK

Ser.

x

      

Coxsackievirus

PCR

AWM, Li., Stu.

 

x

 

x

   

Cryptococcus gattii

PCR

Li.

x

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Cryptococcus gattii

Kultur

siehe "mögliche Materialien

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Cryptococcus neoformans

PCR

Li.

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Cryptococcus neoformans

Kultur

siehe "mögliche Materialien"

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Stand: Februar 2023

Legende Wochentage

Symbol

Erklärung

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Bearbeitung der Materialien bei Probeneingang bis 18:00 Uhr
(die Bearbeitungszeiten variieren methodenbedingt zwischen 0,5 h bis 28 d)

x1

Bearbeitung der Materialien bei Probeneingang bis 10:30 Uhr
(die Bearbeitungszeiten variieren methodenbedingt zwischen 0,5 h bis 28 d)

x2

sofortige Bearbeitung nur bei Augenabstrichen (Keratokonjunktivitis epidemica), sonst am Folgetag

x3

sofortige Bearbeitung der HIV-Serologie im Rahmen von Nadelstichverletzungen (NSV)

Bearbeitungszeiten

Bearbeitungszeiten

Nachfolgend finden Sie orientierend die Bearbeitungszeiten bis zur Erstellung des Endbefunds.

Relevante Ergebnisse werden als Zwischenbefunde vorzeitig berichtet:

Kulturdiagnostik

Bakterien

Pilze

Tuberkulose

 
  • variabel
  • in der Regel 5 Tage
 
 
  • variabel
  • in der Regel 5 Tage
  • In Sonderfällen (z. B. Dermatophyten) bis zu 4 Wochen
 
 
  • frühestens nach 2 Wochen
  • bis zu 12 Wochen
 

Serologie

  

Molekularbiologie

  

 


Stand: Januar 2025

Bearbeitungszeiten


Inhaltsverzeichnis

Hygienemerkblätter der UMR

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