Hygienemerkblätter (HMB) der UMR

Invasive bakterielle Enteritiden

(EHEC/EIEC, Shigellen, Typhus)

Meldepflicht

Jeder Verdacht auf Vorliegen bzw. sicherer Nachweis eines Typhus/Paratyphus oder eines hämolytisch-urämischen Syndroms sowie mehr als 2 Erkrankungen mit EHEC, EIEC oder Shigellen, bei denen ein epidemischer Zusammenhang wahrscheinlich ist oder vermutet wird, ist namentlich zu melden an:

Gesundheitsamt
Abteilung Infektionsschutz
Paulstraße 22
18055 Rostock
0381 381 9552

  • Pflichtformular laut Infektionsschutzgesetz § 6 (1)
  • Einzelerkrankungen einer infektiösen Gastroenteritis bei Personen mit Tätigkeiten in Lebensmittelberufen (§ 42 IfSG)
  • Formulare sind hier bzw. im SAP abrufbar
  • Benachrichtigung der Hygienefachkraft
    0381 494 5014

Erreger

Escherichia coli

  • EHEC - Entero-hämorrhagische E. coli
  • EIEC - Entero-invasive E. coli

Shigella spp.

  • insbesondere S. dysenteriae mit schweren Krankheitsverläufen assoziiert

Salmonella Typhi/S. Paratyphi

Cave
Alle oben genannten Erreger weisen eine sehr geringe Infektions­dosis auf!

EHEC/EIEC haben auch natürliche tierische Wirte (insbesondere Kälber), Shigellen und S. Typhi/Paratyphi sind aus­schließlich Mensch-assoziiert.

Infektiöses Material

Fäzes (Stuhl), ggf. Erbrochenes

Bei systemischer Infektion auch Blut und alle Materialien aus infizierten Geweben/Körperhöhlen.

Kontaminierte Nahrungsmittel tierischen und pflanzlichen Ursprungs (EHEC/EIEC), Trinkwasser.

Übertragungsweg

Fäkal-oral, das heißt durch direkten Kontakt von Mensch zu Mensch sowie durch kontaminiertes Trinkwasser oder Lebensmittel.

Kontakt mit infektiösen Patientenmaterialien und mit der kontaminierten Patientenumgebung.

Im Fall von EHEC/EIEC auch direkte Tier-Mensch-Kontakte.

Inkubationszeit

EHEC/EIEC

  • (2-) 3-4 (-10) Tage

Shigellen

  • 12-96 Stunden

S. Typhi/Paratyphi

  • 1-3 Wochen

Dauer der Infektiosität

1-4 Wochen

S. Typhi/Paratyphi Dauerausscheiderstatus möglich!

Diagnostik (zum Erstnachweis bzw. Verlauf)

Stuhlprobe und/oder Blutkulturen in die Mikrobiologie mit spezifischer Untersuchungsanforderung

Keine Verlaufsdiagnostik aus rein hygienischer Indikation erforderlich.

Hygienemaßnahmen/Schutzmaßnahmen

Isolierung

Einzelunterbringung mit eigener Toilette zwingend erforderlich.

Entisolierung

Bei Entlassung des Patienten bzw. nach Rücksprache mit der Krankenhaushygiene

Kontaktpatienten

Mitpatienten werden beobachtet, um das Auftreten krankheitsspezifischer Symptome rechtzeitig zu bemerken.

Besucher

Die jeweiligen Patientenzimmer sind mit der Isolierungstafel zu kennzeichnen.

Alle Personen (Besucher wie Mitarbeiter) müssen sich vor dem Betreten des Zimmers im Stationsstützpunkt melden.

Die Besucher werden vom Stationspersonal über die Infektionsrisiken informiert und in die speziellen Hygiene­maßnahmen eingewiesen.

Grundsätzlich gelten die gleichen Hygienemaßnahmen wie für das medizinische Personal.

Ambulanter Bereich

Patient muss isoliert werden.

Händedesinfektion

Händedesinfektion gemäß Basishygieneordnung

Alle im Hause verfügbaren Händedesinfektionsmittel sind geeignet.

Einwirkzeit beachten!

Patienten
Nach jedem Toilettenbesuch
(Anleitung der Händedesinfektion durch das Stationspersonal)

Einmalhandschuhe

Erforderlich bei Kontakt mit der erkrankten Person sowie mit erregerhaltigem Material, Körperflüssigkeiten oder Ausscheidungen.

Nach dem Ablegen hygienische Händedesinfektion!

Schutzkittel

Erforderlich bei Kontakt mit der erkrankten Person sowie mit erregerhaltigem Material, Körperflüssigkeiten oder Ausscheidungen.

Mund–Nasen-Schutz/Schutzbrille

Nicht erforderlich

Wäscheentsorgung

Entsorgung im Patientenzimmer oder Schleuse.

Transport zur Wäscherei im fest verschlossenen Wäschesack (infektiöse Wäsche).

Geschirr

Geschirrspülautomat, Betriebstemperatur > 60 °C

Sofern vorhanden, chemisch-thermische Desinfektion mit Gewerbegeschirrspüler.

Pflege-/Behandlungs- und Untersuchungsgeräte und -Hilfsmittel (Medizinprodukte)

Nach Gebrauch desinfizierend reinigen bzw. Aufbereitung nach Herstellerangaben bzw. verwerfen.

Abfallentsorgung

Mit infektiösem Material kontaminierte Gegenstände als Abfallgruppe C (AS 18 01 03, „blaue Tonne“)

Fäzes und Urin in die Kanalisation

Flächendesinfektion

Routinemäßig laut Basishygieneordnung sowie nach Kontamination bzw. Entlassung (siehe BHO/Desinfektion)

Desinfektionsmittel laut Desinfektionsplan

Patiententransfer

Transportdienst und Zielbereich sind zu informieren.

Die Patienten müssen zum Verlassen des Zimmers eine hygienische Händedesinfektion durchführen
(siehe Händedesinfektion).

Besonderheiten im OP

Es ist nicht notwendig, infektiöse Patienten am Ende des Programms zu behandeln.

Die Standardhygiene für den OP-Bereich ist ausreichend!

Besonderheiten für das Personal

Schwangere Mitarbeiterinnen

Arbeiten auf Station ist möglich.

Kontakt mit Sekreten oder Exkreten des erkrankten Patienten muss vermieden werden.

Stand: August 2020

Invasive bakterielle Enteritiden


Weiterführende Informationen

Einsenderhinweise

(Auszug Einsenderhinweise IMIKRO)

Darmpathogener Escherichia coli

Darmpathogener Escherichia coli

Erreger

 
  • EHEC (Enterohämorrhagischer E. coli)
  • EPEC (Enteropathogener E. coli)
  • ETEC (Enterotoxischer E. coli)
  • EAEC (Enteroaggregativer E. coli)
  • STEC (Shiga-Toxin produzierender E. coli)
 

Verfahren

Nachweis von DNA

Indikation

 
  • Gastroenteritis
  • Enterohämorrhagische Kolitis
  • Hämolytisch-urämischen Syndrom (HUS)
  • Thrombotisch-thrombozytopenische Purpura (TTP)
 

Material

Stuhlprobe

Methode

Qualitativer DNA-Nachweis der Erregers mittels Real‑time‑PCR (Multiplex-PCR)

Lauris-
Auftragserteilung

PCR/allgemeine Auftragsinformation → Multiplex-PCR (Gastroenteritiserrerger) → Multiplex-PCR → Multiplex-Gastroenteritis PCR – Bakterien (Panel 3)

Weiterführende Informationen

Hygienemerkblätter der UMR

 

Stand: Januar 2021

Darmpathogener Escherichia coli

Salmonella spp.

Salmonella spp.

Verfahren

Kultureller Nachweis

Nachweis von DNA

Indikation

 
  • Typhus oder Paratyphus A/B
  • bakterielle Durchfallerkrankung
 

Material

Kultur

  • Blutkultur
  • Stuhl

PCR

  • Stuhl
 

Methode

Kultur

Kultureller Erregernachweis aus Stuhlproben bzw. bei positiver Blutkultur auf Universal- und Selektivnährmedien + Basistypisierung + Resistenztestung

PCR

Qualitativer Erregernachweis mittels Nukleinsäurediagnostik (PCR)

Lauris-
Auftragserteilung

Kultur

Allgemeine Vorlagen → Mikrobiologie → Bakteriologie Erreger + Resistenz → Blutkultur E+R

PCR

Allgemeine Vorlagen → Mikrobiologie → Multiplex PCR Gastroenteritiserreger → Multiplex-Gastroenteritis PCR Bakterien (Panel 2)

Weiterführende Informationen

Bei positivem PCR-Ergebnis wird ein Kulturansatz laborintern ergänzt.

Am Nationalen Referenzzentrum für Salmonellen und andere bakterielle Enteritiserreger wird eine über die Basistypisierung hinausreichende Sub- und Feintypisierungen zur Aufklärung von epidemischen Prozessen und Erregerquellen durchgeführt.

Hygienemerkblätter der UMR

 

Stand: Januar 2021

Salmonella spp.

Shigella spp./EIEC (Enteroinvasive E. coli)

Shigella spp./EIEC (Enteroinvasive E. coli)

Verfahren

Kulturelle Anzucht

Nachweis von DNA

Indikation

 
  • Diarrhoe (wässrig bis schleimig-blutig) mit kolikartigen Darmbeschwerden und Tenesmen
  • hämolytisch-urämisches Syndrom (HUS)
 

Material

Kultur

Stuhl

PCR

Stuhl

Methode

Kultur

Anzucht auf selektiven Nährböden und gegebenenfalls  Resistenztestung

PCR

Qualitativer Nachweis von Shigella spp. / EIEC-DNA mittels Multiplex Real-time-PCR Gastroenteritis Panel 2

Lauris-
Auftragserteilung

PCR

Allgemeine Vorlagen → Mikrobiologie → PCR/allgemeine Auftragsinformationen → Multiplex PCR Gastroenteritiserreger → Multiplex-Gastroenteritis PCR Bakterien (Panel 2)

Weiterführende Informationen

Bei positivem PCR-Ergebnis wird ein Shigella spp.-spezifischer Kulturansatz laborintern ergänzt.

Hygienemerkblatt der UMR

 

Stand: Januar 2021

Shigella spp./EIEC (Enteroinvasive E. coli)

Gastroenteritiserreger

Gastroenteritiserreger


Verfahren

Nachweis von RNA/DNA

Indikation

Gastroenteritis

Material

Stuhl

Methode

Qualitativer Nukleinsäure-Nachweis im Multiplex-Format im Real-Time-PCR-Verfahren

Lauris-
Auftragserteilung

PCR

  • Multiplex PCR-Gastroenteritisviren → Multiplex-Gastroenteritis Viren PCR (Panel 1)
  • Multiplex PCR-Gastroenteritisviren → Multiplex-Gastroenteritis Bakterien PCR (Panel 2)
  • Multiplex PCR-Gastroenteritisviren → Multiplex-Gastroenteritis Bakterien PCR (Panel 3)
  • Multiplex PCR-Gastroenteritisviren → Multiplex-Gastroenteritis einzellige Parasiten PCR (Panel 4)
 

Weiterführende Informationen

Folgende Erreger können in der Multiplex-PCR nachgewiesen werden:

Gastroenterotrope Viren (Panel 1)

  • Norovirus Genogruppe 1
  • Norovirus Genogruppe 2
  • Adenovirus
  • Rotavirus
  • Astrovirus
  • Sapovirus

Gastroenterotrope Bakterien (Panel 2)

  • Campylobacter spp.
  • Clostridioides difficile Toxin A/B
  • Salmonella spp.
  • Shigella spp. / EIEC
  • Vibrio spp.
  • Yersinia enterocolitica
  • Aeromonas spp.

Gastroenterotrope Bakterien (Panel 3)

  • C. difficile Ribotyp O27
  • Escherichia coli O157
  • STEC (Shigatoxin bildende Escherichia coli,  stx 1/2)
  • EPEC (Enteropathogene Escherichia coli, eaeA)
  • ETEC (Enterotoxische Escherichia coli, lt/st)
  • EAEC (Enteroaggregative Escherichia coli, aggR)

Gastroenterotrope Parasiten (Panel 4)

  • Giardia lamblia
  • Entamoeba histolytica
  • Cryptosporidium spp.
  • Blastocystis hominis
  • Dientamoeba fragilis
  • Cyclospora cayatenensis

Bei positivem PCR-Nachweis von Erregern aus dem Panel 2 (außer Clostridioides difficile-Toxin) wird eine kulturelle Erregeranzucht für eine phänotypische Resistenztestung durchgeführt.


Stand: Januar 2021

Gastroenteritiserreger

Zeitliches Bearbeitungsschema

Ungezielte, allgemeine Anforderungen

(Auszug zeitliches Bearbeitungsschema IMIKRO)

Erreger

Nachweisart

Geeignete Materialien

Mo.

Di.

Mi.

Do.

Fr.

Sa.

So.

Bakterien aerob (E+R) + ggf. Antibiogramm

Kultur

siehe "mögliche Materialien"

x

x

x

x

x

x1

x1

Bakterien aerob + anaerob (E+R) + ggf. Antibiogramm

Kultur

siehe "mögliche Materialien"

x

x

x

x

x

x1

x1

Bakterien Gastroenteritis

Kultur

Stu.

x

x

x

x

x

x1

x1

Multiplex-PCR Gastroenteritis Bakterien

PCR

Stu.

x

x

x

x

x

 

x1

Multiplex-PCR Gastroenteritis Viren

PCR

Stu.

x

x

x

x

x

 

x1

Multiplex-PCR Herpesviren 1-6 (Herpes Consensus)

PCR

EDTA-Bl., AWM, Li., Gew., Abstr., Ur.

x

x

x

x

x

 

x1

Multiplex-PCR Meningitis/Enzephalitis (ambulant erworben)

PCR

Li.

x

x

x

x

x

x

x

Multiplex-PCR Respiratorische Pathogene

PCR

AWM

x

x

x

x

x

x1

 

Multiplex-PCR Sepsis

PCR

Blutkultur

x

x

x

x

x

x1

x1

Multiplex-PCR STD (Sexually Transmitted Disease)

PCRUr., Abstr. x x   

Pilze + ggf. Antimykogramm

Kultur

siehe "mögliche Materialien"

x

x

x

x

x

x1

x1

Universelle PCR Bakterien (16S-rDNA-PCR)

PCR/Seq.

alle primär sterilen Materialien

 

x

 

x

   

Universelle PCR Pilze (18S-rDNA-PCR)

PCR/Seq.

alle Materialien (außer Stu.)

 

x

 

x

   

Stand: April 2022

Legende Wochentage

Symbol

Erklärung

x

Bearbeitung der Materialien bei Probeneingang bis 18:00 Uhr
(die Bearbeitungszeiten variieren methodenbedingt zwischen 0,5 h bis 28 d)

x1

Bearbeitung der Materialien bei Probeneingang bis 10:30 Uhr
(die Bearbeitungszeiten variieren methodenbedingt zwischen 0,5 h bis 28 d)

x2

sofortige Bearbeitung nur bei Augenabstrichen (Keratokonjunktivitis epidemica), sonst am Folgetag

x3

sofortige Bearbeitung der HIV-Serologie im Rahmen von Nadelstichverletzungen (NSV)


Inhaltsverzeichnis

Hygienemerkblätter der UMR

Inhalt Y